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Crispr-Cas9

allgemeines

 
Cas9 Bakterien-Enzym zur Abwehr von Phagen. Erkennt fremde DNA und zerschneidet sie.
CRISPR Clustered Regularly Interspaced Palindromic Repeats palindromisch: DNA-Abschnitte, deren Stränge gegenläufig die gleiche Sequenz aufweisen.
Cas CRISPR-associated Protein CAS fügt kleine DNA-Fragmente von Phagen zwischen 2 CRISPR in das Bakteriengenom ein. Diese Phasen-DNA wird in RNA übersetzt und dient CAS dazu, fremde DNA zu erkennen, um sie dann zu zerschneiden.
Cas9 Bakterien-Enzym zur Abwehr von Phagen. Erkennt fremde DNA und zerschneidet sie.
CRISPR-Cas CRISPR erkennt gehäuft auftretende, gleichmäßig verteilte Wiederholungen und CAS zerscheidet die RNA(1). Auch für Genmanipulation benutzt.
6 CRISPR/Cas-Typen 19 Untertypen
Typ II CRISPR/Cas9 Spacer-Sequenzen werden in RNA-Moleküle umsetzt. Die RNA-Moleküle leiten eine Endonuklease zu der eindringenden Fremd-DNA hin, so dass es diese zerschneidet.
Typ VI Enzyme zerlegen die RNA statt DNA. Es fehlen die palindromischen Wiederholungen und der Apparat zum Einbau der Spacer.
Typ III Am häufigsten Reagieren auf den Prozess des Umschreibens von DNA in RNA
EcoRI Restriktionsenzyme Schneidet die DNA an der spezifischen Erkennungssequenz GAATTC.
AA/CGTT AclI
A/AGCTT HindIII HindIII-HF®
AAT/ATT SspI SspI-HF®
/AATT MluCI
A/CATGT PciI
A/CCGGT AgeI AgeI-HF®
ACCTGC(4/8) BspMI BfuAI
A/CCWGGT SexAI
A/CGCGT MluI MluI-HF®
ACGGC(12/14) BceAI
A/CGT HpyCH4IV
ACN/GT HpyCH4III
(10/15)ACNNNNGTAYC(12/7) BaeI
(9/12)ACNNNNNCTCC(10/7) BsaXI
A/CRYGT AflIII
A/CTAGT SpeI SpeI-HF®
ACTGG(1/-1) BsrI
ACTGGG(5/4) BmrI
A/GATCT BglII
AGC/GCT AfeI
AG/CT AluI
AGG/CCT StuI
AGT/ACT ScaI-HF®
AT/CGAT ClaI BspDI
ATCTATGTCGGGTGCGGAGAAAGAGGTAAT(-15/-19) PI-SceI
ATGCA/T NsiI NsiI-HF®
AT/TAAT AseI
ATTT/AAAT SwaI
(11/13)CAANNNNNGTGG(12/10) CspCI
C/AATTG MfeI MfeI-HF®
CACGAG Nb.BssSI
CACGAG(-5/-1) BssSI-v2
CACGTC(-3/-3) BmgBI
CAC/GTG PmlI
CACNNN/GTG DraIII-HF®
CACNN/NNGTG AleI-v2
CAGCAG(25/27) EcoP15I
CAG/CTG PvuII PvuII-HF®
CAGNNN/CTG AlwNI
CAGTG(2/0) BtsIMutI
CA/TATG NdeI
/CATG FatI
C/ATG CviAII
CATG/ NlaIII
CAYNN/NNRTG MslI
CC(12/16) FspEI
CCANNNNN/NNNNTGG XcmI
CCANNNNN/NTGG BstXI
CCANNNN/NTGG PflMI
CCATC(4/5) BccI
C/CATGG NcoI NcoI-HF®
CCCAGC(-5/-1) BseYI
CCCGC(4/6) FauI
C/CCGGG XmaI TspMI
CCC/GGG SmaI
(0/-1)CCD Nt.CviPII
CCDG(10/14) LpnPI
CCGC(-3/-1) AciI
CCGC/GG SacII
CCGCTC(-3/-3) BsrBI
C/CGG MspI HpaII
/CCNGG StyD4I
CC/NGG ScrFI
C/CNNGG BsaJI
CCNNNNN/NNGG BslI
C/CRYGG BtgI
CC/SGG NciI
C/CTAGG AvrII
CCTC(7/6) MnlI
CCTCAGC(-5/-7) Nt.BbvCI
CCTCAGC Nb.BbvCI
CCTCAGC(-5/-2) BbvCI
CCTGCA/GG SbfI SbfI-HF®
CCTNAGC(-5/-2) Bpu10I
CC/TNAGG Bsu36I
CCTNN/NNNAGG EcoNI
CCTTC(6/5) HpyAV
/CCWGG PspGI
CC/WGG BstNI
C/CWWGG StyI-HF®
(10/12)CGANNNNNNTGC(12/10) BcgI
CGAT/CG PvuI PvuI-HF®
CG/CG BstUI
C/GGCCG EagI EagI-HF®
CG/GWCCG RsrII
CGRY/CG BsiEI
C/GTACG BsiWI BsiWI-HF®
CGTCTC BsmBI-v2
CGTCTC(1/5) Esp3I
CGWCG/ Hpy99I
CMG/CKG MspA1I
CNNNNNNNNNNN/NNNNNNNNNG AbaSI
CNNR(9/13) MspJI
CR/CCGGYG SgrAI
C/TAG BfaI
CTCAG(9/7) BspCNI
C/TCGAG XhoI PaeR7I
CTCTTC(1/4) EarI
CTGAAG(16/14) AcuI
CTGCA/G PstI PstI-HF®
CTGGAG(16/14) BpmI
C/TNAG DdeI
C/TRYAG SfcI
C/TTAAG AflII
CTTGAG(16/14) BpuEI
C/TYRAG SmlI
C/YCGRG AvaI BsoBI
GAAGA(8/7) MboII
GAAGAC(2/6) BbsI BbsI-HF®
GAANN/NNTTC XmnI
GAATGC(1/-1) BsmI
GAATGC Nb.BsmI
G/AATTC EcoRI EcoRI-HF®
GACGC(5/10) HgaI
GAC/GTC ZraI
GACGT/C AatII
GACN/NNGTC Tth111I PflFI
GACNN/NNGTC PshAI
GACNNN/NNGTC AhdI
GACNNNN/NNGTC DrdI
GAGCT/C SacI SacI-HF®
GAG/CTC Eco53kI
GAGGAG(10/8) BseRI
GAGTC(4/-5) Nt.BstNBI
GAGTC(5/5) MlyI
GAGTC(4/5) PleI
G/ANTC HinfI
GAT/ATC EcoRV EcoRV-HF®
GA/TC DpnI
/GATC MboI Sau3AI DpnII
GATNN/NNATC BsaBI
G/AWTC TfiI
GCAATG Nb.BsrDI
GCAATG(2/0) BsrDI
GCAGC(8/12) BbvI
GCAGTG Nb.BtsI
GCAGTG(2/0) BtsI-v2
GCANNNN/NTGC BstAPI
GCATC(5/9) SfaNI
GCATG/C SphI SphI-HF®
GCCC/GGGC SrfI
GCCGAG(21/19) NmeAIII
G/CCGGC NgoMIV
GCC/GGC NaeI
GCCNNNN/NGGC BglI
GCGAT/CGC AsiSI
GCGATG(10/14) BtgZI
GCG/C HhaI
G/CGC HinP1I
G/CGCGC BssHII
GC/GGCCGC NotI NotI-HF®
GC/NGC Fnu4HI
GCN/NGC Cac8I
GCNNNNN/NNGC MwoI
GCTAG/C BmtI BmtI-HF®
G/CTAGC NheI NheI-HF®
GCTCTTC(1/-7) Nt.BspQI
GCTCTTC(1/4) SapI BspQI
GC/TNAGC BlpI
G/CWGC TseI ApeKI
GDGCH/C Bsp1286I
GGATC(4/-5) Nt.AlwI
GGATC(4/5) AlwI
G/GATCC BamHI BamHI-HF®
GGATG(9/13) FokI
GGATG(2/0) BtsCI
GG/CC HaeIII
GGCCGG/CC FseI
GGCCNNNN/NGGCC SfiI
G/GCGCC KasI
GGCGC/C PluTI
GG/CGCC NarI
GGC/GCC SfoI
GG/CGCGCC AscI
GGCGGA(11/9) EciI
GGGAC(10/14) BsmFI
GGGCC/C ApaI
G/GGCCC PspOMI
G/GNCC Sau96I
GGN/NCC NlaIV
G/GTACC Acc65I
GGTAC/C KpnI KpnI-HF®
GGTCTC(1/5) BsaI BsaI-HF®v2
GGTGA(8/7) HphI
G/GTNACC BstEII BstEII-HF®
G/GWCC AvaII
G/GYRCC BanI
GKGCM/C BaeGI
GR/CGYC BsaHI
GRGCY/C BanII
GT/AC RsaI
G/TAC CviQI
GTATAC BstZ17I-HF®
GTATCC(6/5) BciVI
G/TCGAC SalI SalI-HF®
GTCTC(1/-5) Nt.BsmAI
GTCTC(1/5) BsmAI BcoDI
G/TGCAC ApaLI
GTGCAG(16/14) BsgI
GT/MKAC AccI
GTN/NAC Hpy166II
/GTSAC Tsp45I
GTT/AAC HpaI
GTTT/AAAC PmeI
GTY/RAC HincII
GWGCW/C BsiHKAI
NNCASTGNN/ TspRI
R/AATTY ApoI ApoI-HF
RCATG/Y NspI
R/CCGGY BsrFI-v2
R/GATCY BstYI
RGCGC/Y HaeII
RG/CY CviKI-1
RG/GNCCY EcoO109I
RG/GWCCY PpuMI
TAACTATAACGGTCCTAAGGTAGCGAA(-9/-13) I-CeuI
TAC/GTA SnaBI
TAGGGATAACAGGGTAAT(-9/-13) I-SceI
T/CATGA BspHI
T/CCGGA BspEI
TCCRAC(20/18) MmeI
T/CGA TaqI-v2
TCG/CGA NruI NruI-HF®
TCN/GA Hpy188I
TC/NNGA Hpy188III
T/CTAGA XbaI
T/GATCA BclI BclI-HF
TG/CA HpyCH4V
TGC/GCA FspI
TGGCAAACAGCTATTATGGGTATTATGGGT(-13/-17) PI-PspI
TGG/CCA MscI
T/GTACA BsrGI BsrGI-HF®
T/TAA MseI
TTAAT/TAA PacI
TTA/TAA PsiI-v2
TT/CGAA BstBI
TTT/AAA DraI
VC/TCGAGB PspXI
W/CCGGW BsaWI
YAC/GTR BsaAI
Y/GGCCR EaeI
Quellen 1.) Fonfara I, et al.:
Phylogeny of Cas9 determines functional exchangeability of dual-RNA and Cas9 among orthologous type II CRISPR-Cas systems.
Nucleic Acids Research, doi: 10.1093/nar/gkt1074; 2013

2.) Nunez J K, et al.:
Integrase-Mediated Spacer Acquisition during CRISPR-Cas Adaptive Immunity.
Nature 2015;519:193–198

3.) Shipman S L, et al.:
Molecular Recordings by Directed CRISPR Spacer Acquisition.
Science 2016;353:aaf1175

Impressum                           Zuletzt geändert am 20.09.2020 7:05